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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
# F, U# u0 u3 i0 ?0 y8 W0 g( iAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) ; `3 I9 D% H+ W4 R5 W- y9 b% Q, z
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
; z; W0 U* H: ~9 I4 h' S  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 ; d- [4 Y, \, u$ @1 n
1 材料与方法
( o, e, n; D( f8 o" f1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
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5 A8 u4 }) S1 ^1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 1 D  g  Q- ?2 x/ @" r
2 结果分析
/ k$ e# O! a5 ]- s$ c2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
  w4 f7 U4 N: y! _表3  4株机油降解菌形态特征
+ Z# d1 Y/ G" `, t* R! Q
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  b6 s' J1 f9 H. u' e% G8 J0 TZL36 J9 R+ X, D' N7 p
ZL4% i  h! y# k3 R1 H2 `' U0 i

2 a2 j3 m4 b+ {菌落颜色
8 j' H8 L( R2 @3 h( U$ V2 K粉红
. m+ O# V' V1 j) n& a( }  j4 O淡黄
, p7 o& g# c" D! `* m淡黄2 a$ k1 U: d- B; L* n
粉红
, Z) b' o& W' q9 v/ B- Q' N2 H& g' P- p: Q. p, W! d2 U% g
菌落形态8 L4 G$ d1 _1 L/ ^# G
不透明,微隆起,全缘,7 i3 R7 z8 y4 \2 `$ J; e
半透明,圆形7 E* f; i/ z! m  P( q5 H
半透明,圆形,隆起,
" q/ P$ L/ `7 C) H, T9 V不透明,米粒状突起,) i% @4 ]1 ~! K' e2 {

! f. [% e& F% d" @* Q; Q+ z/ G% @ 
: O7 G5 F7 ~+ G; c8 [; {光滑,有光泽
& ~) y% k- L! r# v6 E光滑,较干燥
( M7 [5 z8 Y- b4 @+ T$ `4 Y光滑,有光泽
7 ~" o0 M- c: S0 E& c较湿润. Q$ p+ P! R3 |" s4 V! t5 N

$ V, p" J' g% h% J+ R; h" c' N菌体形态
2 j7 f, m+ U/ q2 Z短杆
3 o* c0 `9 }+ v0 G7 Z. _球形1 x7 {- Z3 X% w( _" s" I
杆状  z$ p. h# F& K$ D; W1 E
丝状, X/ Y" E4 c; k+ g3 U; ^2 e
) x3 l5 t4 D$ w3 c7 y4 Q; O
菌体大小/μm" n) s$ u1 N* l) ]
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
6 Y$ e6 x' D. g; NΦ0.3
9 h- ^! p" g7 q) J; G(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
$ ]4 Y% N% u8 d, _5 m. `5 Z0.2×(6-60); v# `5 I" G3 [: Y

# b- N, Y( C! X: D) w4 y8 W革兰氏染色) l) z1 {/ A% r% ]3 n
G- N( f7 t8 F( j, m1 z
G
2 Q9 l8 t9 }2 i% s9 d6 FG9 R' p- O  a  u! s; ~" Q
G
0 Y5 Z: M& _3 C6 A% G* q6 O1 Y. \' c/ d) u. P
初步鉴定' L( U5 i, L6 V' m3 {: b) p+ Z, h
黄杆菌属( `8 X  I. A" M7 C
微球菌属
9 v6 |; o; B) N( f& O: ?假单胞菌属) [! \; x: n0 K0 @* @
酵母菌属
. m% L$ f" w0 u* T$ M9 U2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 # d) V! m# B  i% P4 u
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3 结论
$ ^/ E2 H5 d( O. C; d  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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6 W7 M& j+ S) [. m, I  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。7 q3 w# A4 g9 u9 U9 u1 u+ D6 U% s

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