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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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8 l( h2 ~( G& D% K4 t1 h$ t  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-031 w" s2 u; B9 |( K
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, X......

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' S& G+ e* Z8 a  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03' I2 p$ X. d# G
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) % g( f- P5 g+ `
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
) M9 o2 C' M7 ^  E  x- }; [  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
0 M# Q9 m, P+ J5 K8 t1 材料与方法 1 I2 \3 ?$ j2 e, g4 |
1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
) i- l; c" M1 k+ [表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 * [. l0 `( _/ ], D! G

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( T- N$ {9 p) D分组号
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179
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14
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 ' c" R9 t$ p; L
表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
9 c  `6 @# m* n* f' T0 C
4 D  ^( p# W  ~7 K8 V# l5 y
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2 k  w% T$ z4 r' V- \$ w分组号
2 u: O: g' q  q0 e. M, i因素) P5 A. t" H+ @: g( t
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
0 [  @  a1 r1 _8 n降解测量ρ(油)/(mg.L-1)# n4 Y5 c8 a0 T/ {7 y: @& Q' m+ a% f
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25$ Q& f9 N7 w+ `* q
 
9 `2 C! M: }  d5 h* Z$ |0 i) { 
/ V6 v! Q# l! M+ n; O4 d1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
( c' o9 C3 W" u2 结果分析 % J" \. L  A1 }% U
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 ' Y/ J7 U4 {7 w8 `3 f  m
表3  4株机油降解菌形态特征
8 P1 B- g7 \, Z  x, J
( f# g7 Y) L8 C; J" |( k, }3 L% i( K! v' Z% J- y) \! X
9 q, {( G" H' i  ^

* a; c7 n: ^4 W  |0 k/ F形态特征4 E! T% m& Q1 B2 t5 f/ Z1 A
ZL1
. i9 |' v! x2 O* pZL2* x8 B1 l7 v, _3 ^' q7 C) u; b
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2 k& j4 u1 U( Z7 ?% F) O  H菌落颜色
' ]1 K. {6 I. ^粉红9 H5 K7 G- Z0 M) D
淡黄
, e: Z& Z; w6 U) U; w淡黄2 X+ m* j: r( [% u1 U# c9 F' w. [
粉红
' h7 n6 G  `4 r5 |7 X6 D* g0 a2 o) X- {6 T% H
菌落形态! m1 q6 @# D& V+ f0 h& X
不透明,微隆起,全缘,: a, ^; F9 A4 @- H' G( U8 @
半透明,圆形
4 z, G4 V; E' V" W半透明,圆形,隆起,
0 y" t6 F9 `" e5 N! i不透明,米粒状突起,
+ ?; e' a! D2 D% v3 E
+ n' V2 H5 h6 @, \5 z " D0 E$ q* D- \/ V3 \  z7 u
光滑,有光泽
" k- d3 i2 }9 n) f: [- F1 H光滑,较干燥" j: z2 p/ ]& F; m* }4 Y9 a# `" k7 `
光滑,有光泽
9 S. M/ \6 b& m2 k9 j3 y/ x较湿润- T$ o( w: s# S$ {

" R2 X5 F. v* u$ l! H" g0 ^, P9 f菌体形态
* c1 g7 R* X7 e; N短杆
9 x, I2 u% r$ i2 @; q' \球形/ m$ ]3 p, x; V
杆状
7 y, R# p+ M, G丝状! H2 f6 o" f0 v5 T  m% z, a3 w

7 e6 Y: b! G% `& R菌体大小/μm
  ]. U5 f" B9 m4 O( l3 R9 P) K8 W(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
2 C7 N+ m5 r. \& KΦ0.3
# n9 y: Z3 T; i. f(0.5-0.8)×(1.3-5.0)6 `4 G" K! W, u8 Q
0.2×(6-60)& E$ V+ Q8 _# a- ]; |( L
7 r0 B2 S  j8 V0 |1 ^$ a( e
革兰氏染色' l2 j$ c" G3 ]+ Y' C! \* z
G# `+ m- h5 a7 r6 w! c6 n, ]
G
' U* ~" _4 _! x+ Z8 rG" h4 o) R* q5 ?: I4 y# b2 W8 I5 \" c
G
% ?$ n" |# W1 t9 R$ [$ D6 V$ c1 C
初步鉴定
; ~( J- K/ L$ O黄杆菌属
0 f8 C* i2 I2 N微球菌属
+ n; Y9 N! m5 o. y: U" \+ Y假单胞菌属  U$ a. F0 B1 u9 O9 W; \' u8 y( q7 c2 z
酵母菌属' U% T1 C8 ]3 K. S6 `  E( ~4 A3 v& i
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 * ~$ F/ f3 `9 a: t, \2 D% a
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3 结论
9 x/ M9 m) q7 Q  l; Z  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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