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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03- F# v. U$ P) n8 O) f
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
* O( n7 h! Y6 x1 o1 M* X: [  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
) y' s* e# O) b3 g  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 2 E, X9 ~2 E( y* o+ ?1 s: r
1 材料与方法 - n* F6 l( K1 g/ \
1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
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5 Q$ D4 T! R& C& D/ {! B; ~3 T4 X 
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1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
: R" D9 b8 P8 a' M: j- ?2 结果分析
7 a! t. Z$ |2 U# X4 D$ l7 e2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
% Z8 a$ L* t/ W2 g' O4 J- }! \表3  4株机油降解菌形态特征
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% V& ?  D5 q# q$ u9 u

7 S+ `: u" f: P! @' o/ s+ i% E" {# F9 {2 z9 `0 @
形态特征
7 x; N/ u) J. u/ W; t5 WZL1- g" U' [0 R: `4 \7 ~/ O
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7 q/ p7 T: G* F2 O- C. ZZL4  ~- y, h2 _1 K) Q5 ^, `5 u, M0 ]6 F
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菌落颜色  z- M- A  c. J. t" f/ x
粉红
  k4 W5 h0 Y6 i' z- H( `淡黄7 |8 ?( K" F; o' l& `
淡黄# b* I9 O: G/ c! P
粉红4 N- r4 s: R) S$ u/ i& G

9 V+ @- Q. d/ g; |$ x# E  W5 X菌落形态9 r1 Q' I) l) ~6 X2 p0 F
不透明,微隆起,全缘,
, `( E. @; |& [半透明,圆形
7 D+ O% {$ e0 q6 _, j0 G半透明,圆形,隆起,
) k! ^; j: }5 _4 E  l不透明,米粒状突起,
( k$ j, r. v0 r: a3 e
& Q% t' j7 s4 P" a' x; k 3 k& ]  u& }0 {2 y& F* v
光滑,有光泽2 V) \9 S* W6 E! q
光滑,较干燥4 ^( ]2 X& Q: G( N
光滑,有光泽
1 ^+ m5 x0 ]( C! N较湿润
9 r0 `7 c& f; v4 y5 p" s9 C9 h$ `% }1 q6 v) |/ |
菌体形态: _/ X" V/ h! T3 k% r! f' W; i* k2 ^
短杆) F) o3 G7 M4 l1 {9 Y
球形
! t, H$ i  X9 f& ^' Z: J, n杆状
+ o( ~9 a7 X8 O' s8 N丝状
4 m7 N' t! L" {4 L2 k+ H( {5 t, @. A& e* v8 P
菌体大小/μm( K# Z( e% A' h/ j+ {7 B
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
9 t# z  u5 c! v/ }$ ]0 }Φ0.3
$ o, u- K6 [8 q; Q! x(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
' y. R. |4 O3 ]' D& A( ^) Z' ^0.2×(6-60)* _/ {+ j4 u( a

+ W/ ^3 \" k" i革兰氏染色
  N3 R! n5 i2 F. r; uG
% ]( g' X, C  \! o% p8 f. r$ A+ UG/ c# l/ F: J9 ~9 b$ p3 `
G3 U& m$ e. D( T! Y6 P5 P5 O5 p
G# m+ b! a1 F# D  Z( t
7 V$ Y; |5 q. a
初步鉴定
$ A$ q/ C! p- ]* A# \; e黄杆菌属
$ r/ C+ U0 l+ v, @- O2 f. Q微球菌属
, \+ J5 s! W0 |' W5 C) ]假单胞菌属  t5 B1 d0 C( ]
酵母菌属
7 I  E9 e! P% x' o2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论
& O- J" y2 N7 W" ]. R4 [4 k0 }& \  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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/ L6 O; s) p$ q; ^  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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