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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-034 }$ e0 j8 T9 ^8 g8 _$ \
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
; X( A1 Y! N- y7 k3 n' wAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
9 M- r/ N3 X0 F1 {  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus 2 V; v  J9 Y3 T. s$ [1 h% S
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
: m6 I- x8 H& M4 d/ o1 材料与方法
1 w$ x# i6 v: w- b1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 * M3 {* x: f$ @3 E" K. R
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果
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2 ^! Z; [, z1 G8 I9 E6 R- z5 q& V测定结果ρ(油)/(mg.L-1)* A4 s! f: H) D( `7 D) U( [
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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果   d, m7 |4 b% b2 {; Y
2 b$ @2 `; W7 q
. c9 d# P0 j- c7 `  y: v+ V  o6 g
9 Y0 q9 S: J! w5 P" ?, p$ C0 {

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5 c( Q% c- q* o; ~# S0 f" ^因素
. Q$ q2 z2 @7 D$ w" u2 m9 w4 j测定结果ρ(油)/(mg.L-1)* b( y; B3 B. r
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)3 S5 b/ N& Z* P' u/ R! x+ f; Q
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pH值
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6 K3 e5 S* X1 u+ G) ?+ e+ R. t 
" j* E0 T3 R. ]* }9 u 
6 E* W4 v" T6 t' y0 Z% v% t1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 $ O# b. G6 x( x2 i7 C9 o
2 结果分析
( T+ q( |# G; N" ^4 t6 l, h2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
9 {$ ^4 P6 }% _! G  X% i表3  4株机油降解菌形态特征
, y/ I1 V/ p4 l% a& u! P! X* d7 D7 V2 D3 j4 H3 `  `$ Q5 u
7 n; |. l. R4 Z
5 a# _4 R: T+ \" M

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( [) @4 i  A* h' d+ y$ s3 GZL2
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菌落颜色( V7 I  V4 {2 Z/ k9 n
粉红$ {; Z+ U) _$ e  ?$ O2 {
淡黄7 O& |0 X( O; v
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粉红; |" K$ s5 W* V1 I  h( B1 g3 K
( J9 D7 y$ L: H( i
菌落形态
: \/ R  e. [5 L/ ^不透明,微隆起,全缘,# [* G7 U2 A# k( H0 l
半透明,圆形
, G9 k" g7 O) ?' L2 M半透明,圆形,隆起,$ V% |+ Z* C! A0 I
不透明,米粒状突起,9 a! K& k# [, Z# x- G$ Y
* Q% g  |+ O. m) K0 d2 g
 
# Z# a0 q* Z4 ^8 Y" l6 }光滑,有光泽
( P  K; D+ S1 v4 T& D5 q  f& R光滑,较干燥0 n: }- O' p) }7 q0 q$ I
光滑,有光泽
3 ^4 d% e' @1 _较湿润( C1 @, g- A7 M' i8 Q0 L

4 M! T2 ^" Q$ @; E菌体形态
1 H3 o; |7 ]' \' i( z2 y短杆
- n; N& t' f) o6 \9 m  r- ^- Y, D" _球形, m- _8 D$ D! m. b0 |, h; O
杆状8 q  L, M2 L9 M6 O! M3 A& t
丝状
' ~: R, H+ x# k' `( [. h. ~; ^- M! h0 f+ ?
菌体大小/μm: h+ K$ `7 F6 c5 L7 m
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
: ^4 q: q  w8 Z, hΦ0.3
: u* D: T* K* x8 w. y4 G(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
* @5 x2 X8 E3 }; V0 X9 @0.2×(6-60)
5 W* w/ D+ y' T% l& G4 |& S  P* L. w+ `& O9 g  ~
革兰氏染色
% s0 M4 C1 W( a  N% vG
5 R4 X$ Y. W7 q  ]; XG
; p% J# W- m. V5 sG
2 U- S1 ^* W! w" JG
9 k% ^. `5 N3 ~( J2 m9 q
7 P7 Y8 [7 o# [" b& C, J初步鉴定
' i) s3 N0 g& B1 p黄杆菌属3 i" W2 r4 c& U# z3 W
微球菌属$ a* O1 c3 a! X; M# U
假单胞菌属
( F" T  P, Q/ T酵母菌属
+ s. _, K+ o7 u( R1 s1 v2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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! R' G2 r, Q  F6 @+ M# w3 结论 6 ^1 O1 F3 h! N, ^& C9 p& X
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。3 g3 A: v% h' r# ]/ i& ]
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