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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03- w |* N3 X/ J: i) k. ]
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, X......: K) ~: s1 M4 M4 y3 L0 D- c, |) b" h
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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03) [- n7 a' V* T9 Q6 j; Q3 H6 }
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
" C4 T( V! x3 ^4 x! Z Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1. Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
7 n) @' X( M+ q. n 近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
! f' T" D r; b0 F/ O+ R# X- Q% O1 材料与方法
+ e) {7 B' k* D; ]6 P* G" v1.1 土壤样品 某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基 本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下: 1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。 2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L. 含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养 称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离 制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验 在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 9 A: W) ^& X0 {. g
表1 ZL1菌株正交试验方案及试验结果
( Z& Y: V" x8 y- Q* C# @& V
0 e3 ]. N; n* a/ R, d4 L( H C
; ^8 c* A u8 f8 A# ~8 P- j! M. R7 h# Q' C( U
$ d( t) R" F; f* p) k! d分组号
- P* k7 r2 X U7 \7 Y因素
, o5 [# z) e# B8 N9 c5 B测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
5 c5 b, n# s/ k" B降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
9 {/ z0 A6 w3 N: t
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ρ(油)/(mg.L-1)
8 L8 w* J4 w7 qpH值
% T; Q# |7 c' N! b3 }) I7 k& F6 u* d. }! F. d. k
1( ]" C7 P/ N, \ _" [2 A$ T
25
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192
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, s# @+ K: |5 G" O" u
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25. |* W _! H$ u* \$ s4 H# ]
680- I( h! r1 @. z2 A- i4 e
7.0) U- I6 n0 a2 z* m/ k7 Y
416
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25
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9.05 m! s$ e8 ~# w5 U$ i- ]/ C, V1 J; s
6301 O7 r0 k) Y; w4 ?4 o" T' a
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( L& e3 \/ y6 r. w6 f! m$ \) }
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5476 J/ p A9 I. a, x1 V
548
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7 f/ v! ?( F! e) p8 C307
0 u' m( h4 e- x, J433
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4 h6 G+ R. J: K% A
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188
! D, c& n+ Y* J0 Q7 M171
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183
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/ f/ p/ v2 G$ _! Q6 I4 @* b2 G8 l( t7 ~
K3
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144
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! L" j/ w4 i$ R! W# J1 z7 L* C- R |5 a! H2 X$ `: ?
- R% F& e( Y! x, m) W! d- ]/ N) G3 R
R( I1 U2 w, ?8 i' k8 w
128
# B" G# R; t+ A7 P4 j8 r44
& L' L' T: |; ?4 @14
9 t: n- B* r2 A s8 [1 o' l" C9 P
u7 x# i8 n: i* t* T$ m7 E0 ]& \) A
$ v" l+ T! Y+ x% H表2 ZL2菌株正交试验方案及试验结果
+ D7 r' ^5 T! I! Y: }
2 \2 F n# Y& U$ v
- e0 I' L7 B1 ~4 u9 ~
+ S2 `5 R6 D3 S. p- ~/ s, O5 o4 | D
分组号
9 X& {8 e/ N, A: ^9 v5 E1 Z8 p因素$ C& H. I+ }$ b, q
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)$ ?. h3 Q/ U, q# k
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
3 ]4 \# r- c' k7 o
. G4 k& i6 p1 }1 N! ]温度/
7 h5 R8 ]0 Q4 ]( Aρ(油)/(mg.L-1)5 l! ]1 B: X5 x, f5 d" G' J2 I
pH值
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4.0
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& C ~4 g& ~. S. m; K2 K0 ~2
) o1 Z* I- H/ a! b9 s! O25
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6.00 h: y x( ]3 Y# I- [
267# R- K7 w7 T6 u$ k
307
5 l9 q% B2 ^: `6 X8 `1 v1 T" ]/ J6 @/ ]
3- V- m+ [; z; w6 C; g0 ^
253 h: d& N8 u8 G, F" w) [3 X
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8.0
- {/ V( ^- Q; I* k! W. q479, _( J5 \- K5 ]% d) M6 n( m$ ]) p
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278
' j( Y" ^4 \6 v1 a0 O8 P; B4 v/ ^* L, c1 V9 p* ]2 @9 ~
6* M, G1 s7 n# l8 b
300 Z5 t3 ~" K$ w# [8 x3 ?
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4.02 c. p4 e% K+ W. q* _
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305
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142
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- o9 D% y& W( Z2 P
' f9 q9 M: B( l* T9 g$ H8$ s: p! B0 }, B( ~4 y) e) o
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574+ I; a9 [6 F, P+ c1 l6 B
4.00 R2 e% w; k3 U' W
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219
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271
1 F6 p; |3 y8 \264
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16$ g3 U2 d, M$ l* n) ^
25
3 V8 r# W) R# P
& e; {+ {0 @2 P 0 u) H4 }8 J3 w j" D4 F/ Y) [- Z4 {
1.5 降解能力试验 配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法 用紫外介光光度法测定。
7 v/ ]" G- x6 l, I2 结果分析
8 i' p6 A4 Y2 N" o- G9 ^5 M2.1 优势菌筛分试验 富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
2 {9 }& x9 u5 b, B3 U表3 4株机油降解菌形态特征
, q% ^& R- L) a* a) t) [6 c W( I+ A1 L# L9 o- p9 q t2 F, `# G
% J0 ^! j) ]4 B# y
7 r- K# J1 e# x0 ~( K
- D, m6 ~! h( j+ K: ^1 K( `, A7 P; ^形态特征
/ R: `* `' c+ {+ N8 l+ ^ZL1- y9 x: k# W/ R7 B6 @! v
ZL2
* a9 N3 R! P- k8 z% w8 |ZL3 |' r% j# Y2 @. N- C
ZL4
" X1 P8 ~6 _' r7 K/ \
1 i6 Q, \! A! L% s, o4 h菌落颜色# l7 \7 s# v9 ?/ R6 k
粉红 d" E4 u, A0 \. ~, g+ `
淡黄
0 F7 w- U* K+ Q0 m* ~淡黄3 y, F4 g- O' j# I( l# G% `+ i+ O5 S
粉红
+ u! u* J6 A/ [7 w7 F- s8 z
% X9 L1 F8 Z6 E3 V W V菌落形态
7 P& v/ n: [0 b& z# |+ a不透明,微隆起,全缘,
' ? o" X# I. l* M半透明,圆形! x c# N: {* S4 V* h
半透明,圆形,隆起,
{8 A2 o2 i A不透明,米粒状突起,
% w" c5 {- T$ B2 S5 J: E+ M: A/ j
- k8 |& L* e Q7 Y, p$ Z, s& T
8 j$ V5 \+ U. h光滑,有光泽
; w; g, w6 V+ @. r9 L光滑,较干燥" ?* U2 f4 ?7 G
光滑,有光泽1 W4 n4 y- z$ l% u! ?
较湿润
# F+ |$ f" I* H7 {; q
- w6 T4 [ G. H菌体形态
; F, l. l2 v. t% C% S短杆
1 B& I0 B0 U3 q0 R2 m+ }) U- H球形/ Y+ M+ I! M+ M- b
杆状
( ~# F8 E0 n$ \$ z3 T丝状. t" {4 x4 C9 r: D& y
- H, W6 g0 s* |4 w' e+ @' v菌体大小/μm, d' D" b, d: x; L1 H/ A4 z
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)1 @1 @( S5 h! T! h3 Y
Φ0.3/ ?8 g. C6 h5 Q$ p- V
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
- B+ c. |, } y: k' J+ Z: \0.2×(6-60)
/ T6 ^" v8 x1 W8 k; [
1 s- d2 r& f7 o: K, E' D革兰氏染色) N! `4 P. j+ o' a6 e) R, w
G$ N- ~- I% e3 |9 z
G
1 Z$ w% }, u/ |( v8 E+ c* U" JG d- o9 ?; j; t" _$ W, w: g
G0 G+ `8 \) H1 V/ \2 ~) h8 z
* @) e) D0 E5 ^/ y; S/ X1 T8 H) p
初步鉴定
& O# b5 d+ ]" A+ L; c" H: }黄杆菌属
b. Q9 h. y! v0 i微球菌属
9 {8 H* X( s) i假单胞菌属9 k# \0 H) k5 o. X5 c& |
酵母菌属
9 \) E) L) ]. S7 U2 {% I$ `8 v" U% [2.2 生长条件正交试验 ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验 向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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$ |! z. I- z5 k3 h3 结论 + ?' Y$ Z$ u- J* s, ]6 u4 B
①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。 ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。 ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 4 D& Y2 T% S L+ m- f% F
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+ W: u1 s. f) s8 ^ 作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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