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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
3 _' i* ~/ l2 h- B) M1 {/ V9 F, ]An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) $ L8 r* V+ l! Q! P6 \) w
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus $ }$ B' c" O! D' J
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
) \5 e% T+ S: b% {# D1 材料与方法
; C- w, _3 n7 b. A1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
1 d. P* \* E' \' r( A表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果
! O/ i0 A5 C8 I, B- P- j, V
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分组号5 X0 S+ J5 H8 A) u( p+ R6 M, d+ ~/ C
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5 I! v8 f. r; o- E6 _2 I分组号6 l' t5 ?7 a  G) ~1 E: q
因素
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' U! X% d' D* x5 s, v降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
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* v) V2 l8 a5 a, Y) J16
3 Q% y( b5 s4 W$ N) g6 R- [- _+ x25
* o% i$ P5 Q1 l: \' } 
  s; y+ H- W2 z: W; C$ w, S 
" |; S( }' I6 V2 k1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
/ {7 c- m' B3 g6 x2 结果分析
' P- X) f+ F1 D: G/ X4 ], p2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
6 P' S) H7 Q/ i. V9 \5 G表3  4株机油降解菌形态特征 # q: n" o% Y, E

  n3 @+ s9 r) H1 F
4 I  s: n- o7 j/ ~
7 ]9 v: ?1 L9 r1 N7 U( h+ {0 T& O/ M7 @' Z7 H7 B
形态特征
& N/ O" Z" U5 v4 B7 N& F% }ZL1
3 {/ I" C% k/ P7 w; N! V6 B- o, yZL2( H6 u0 I+ ]4 k# b! g% {/ \; h
ZL3. g2 }# Z0 ^; E/ \. `
ZL4
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, f9 k2 g- d( ~5 l8 A) s! o粉红
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粉红
( k8 @, B: J. B! J' v7 u* H( A, J
菌落形态
9 Z3 ~& x; S, \$ K: {5 }不透明,微隆起,全缘,3 g( v/ P7 e! i% D
半透明,圆形6 }6 G% E4 \  K% d. u4 l1 w! j
半透明,圆形,隆起,  I6 L7 E. d! ]" z2 u4 e
不透明,米粒状突起,# H  i% P! c" d( i* Q3 u  O

1 l5 v9 i2 v$ l9 d: A; ~ 
# X5 ?1 _  }. \# H光滑,有光泽
: ^* I2 _6 o1 J- S' w2 L% x. p光滑,较干燥
. k9 z# C& G$ y0 X光滑,有光泽
  D1 E" z! D) i8 S较湿润) W1 c; q" B; v; T
  U5 X$ w+ e; f2 C  l7 I. z
菌体形态
- {% [6 O. w& _  }9 i$ n短杆
, s- x! A. _! ?) b+ y1 }+ n' w球形9 E6 C) b* l, w& l$ n
杆状
  D( u1 J; H, l6 V丝状- Y4 S3 f5 Q: }" U+ e7 V( w6 y

. j& F/ h, |4 v菌体大小/μm
& M* C. i- c) d1 M: @(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
: y$ b1 r) s2 C! U# V3 ?! }5 Y. iΦ0.31 F7 ]7 j! {- F) d( D/ ?
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)$ B9 b- e# e: P! ?+ v1 M) V3 D& I
0.2×(6-60); J$ V  a; ]  r8 J/ H6 b4 ~
& R0 M! a+ z2 l" z* W
革兰氏染色8 g, N  v' A$ N$ |# q
G6 U* H/ G. O, k# f
G7 x. m3 |7 Z1 U3 _; [. M, O
G
0 `6 y: h( m0 ~1 F. q5 a* z3 CG
, o8 P, G( @& N% S2 l( a5 N2 n5 {& n# Y3 g9 s( _6 @
初步鉴定
- n$ a9 J4 \3 J8 y黄杆菌属
; v; W& w1 @5 T/ o5 r  E微球菌属
3 z, d. ~/ `! [: d假单胞菌属% i. |* S  F4 a3 t, ?4 O
酵母菌属
6 m& K3 H; |# s( I2 F2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论
+ {' b: ~& C& \1 T" O9 d  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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