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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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* P6 H: k7 D: c. ^  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-034 k/ t# y* w* g+ `$ ]. I2 F
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
6 K  Z; h# Q% \- n  J9 ~" Q2 |  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
% z8 Y7 l1 ^' @3 Q: g  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
# u- e  N' x( ^6 e8 U6 @1 材料与方法
; M7 {$ }- X) c' [& |% u1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 " e0 b( S4 _* r6 Z
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 ( Z; W& n; r% Q4 I) F8 P2 T
% W# G) Y9 K/ ~: W* a+ S

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5 \2 V) P/ R+ o3 y, ]1 k4 H102
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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 0 F# K( m& w2 S4 h( |+ J6 s
3 o4 s9 y: L; @/ c9 }& s

" ~+ Y+ t* x' p9 s$ X4 Q) R+ h2 L# k( C/ s
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分组号7 B) J: N9 Q; _7 Q3 q' S
因素- x0 `, j( R0 p9 Y% ]
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
( ~9 z+ f0 j; U, B" j$ E2 Z降解测量ρ(油)/(mg.L-1)' f/ ?, t7 Q) g/ p$ W
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* t+ n9 C& ], g0 ~7 `0 L6 B* A ; j6 b* [. ^3 d2 P* J7 T
1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
* M, W, H. ~, O7 Z! j2 结果分析 9 W8 c) N, x& D$ A+ h- [. {) V* A
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
5 N- Q9 f: g& J& j' }表3  4株机油降解菌形态特征 - ?( Q7 E; n! |
. V! l' G7 I; Y/ X5 X, J

* F4 B5 ]8 J4 t5 D0 m- W
# w/ U6 _* w; {. r& T* t" s1 z! ~- C7 m2 R5 r" O, k8 c
形态特征
" u9 `9 Y3 \+ p9 P$ x4 cZL1
  p  r8 o$ D# e! G+ `- g* zZL27 A% u4 S- d/ ^) P, a* x! D! V
ZL3- R' g' r7 q$ W# @! T
ZL4
8 L  z5 D; B, r$ i' N* q- I* B
0 @% S% U) x% A$ [3 q菌落颜色
$ V0 f  Q& r& f3 N0 M粉红
" s. @, s4 G9 v. {淡黄
2 M7 k2 ?$ j- j0 u6 E淡黄
. L/ h- _: r* E. W1 J& I  ]粉红7 G7 G% m7 j6 Q' e* z3 a  a5 t7 S

5 `/ J: r( ?% e1 n. |% z菌落形态
( n" @! a/ K) ?8 H! L( _; u" m/ U$ l+ i不透明,微隆起,全缘,
/ ]& P" @! H" O+ N/ [5 u3 z半透明,圆形
- J: q% J+ z& v7 @半透明,圆形,隆起,  ^: H( I% b: L* O1 L9 R- Q6 X
不透明,米粒状突起,
7 A3 z5 D" O! e  Z, ?: B: B1 s
9 ]+ ?6 f1 r2 Y$ `5 o6 e3 L. | 
0 _! h& T- k8 w" @- L' U# Q光滑,有光泽1 U  f: q' O1 a
光滑,较干燥- d# @7 b5 d- P/ }* y" a, V) E
光滑,有光泽
7 n; x  }* |; \4 ]% D3 Y2 Z较湿润% R9 I- M  B1 h- f
! d) b% X, k) i
菌体形态
: O3 f$ I6 g; R, G4 {: s; I3 X3 w4 z短杆: L7 ?0 T' S# m$ u8 E6 U7 f! g
球形3 y' a5 Q- O+ V  v3 |* A
杆状
2 t& X1 a& d+ S" Y) q丝状4 @6 _) K/ J. R- N( F( |: g

* b7 M1 X" @8 @& D4 {# q9 t- ~菌体大小/μm" w2 u8 c( A" T
(0.3-0.8)×(0.6-1.0); Q- N- r; r( G, j" D7 Z. f
Φ0.3# P2 ?" O, \+ Z/ E! k
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)1 [- Y, o$ C' e7 y8 k
0.2×(6-60)
  f8 J+ s) Y  g, N2 s3 s" t/ w2 Y6 j
. n" G! J* q4 f) U革兰氏染色4 @% ]; X! I( N
G) l  ]0 f+ h5 D0 e+ E% x
G4 j" E0 P" d# r- N5 I0 s/ R
G6 k+ _0 Z% Y; o0 ?( D
G* ?! b1 D* v( \4 I

9 {4 `; x1 x$ x2 O初步鉴定
" z' t  i3 b' K+ B: d9 L) H+ Y黄杆菌属
1 o( ?# Q, o) l7 i微球菌属- @. s7 G2 P, R
假单胞菌属/ N$ p1 \( Y) u$ f5 U
酵母菌属6 q+ D% H9 X3 h
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 0 n  ^2 `# ^9 }( F  C

+ {5 t6 Y# _9 G+ c3 结论
# w1 q/ ^2 j4 f, _7 I0 [6 V0 T  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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0 D7 s* I( K9 |  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。8 z3 ~, o/ p9 p1 v: x

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